
取消
清空記錄
歷史記錄
清空記錄
歷史記錄



摘要:
當(dāng)前mRNA脂質(zhì)納米粒(LNP)疫苗的一個(gè)缺點(diǎn)是它們必須在(超)di溫下儲(chǔ)存,了解這些疫苗不穩(wěn)性的根本有助于我們合理提高mRNA-LNP產(chǎn)品的穩(wěn)定性,從而降低對(duì)儲(chǔ)存溫度的要求。在這篇綜述中,我們討論了mRNA-LNP可能的內(nèi)部結(jié)構(gòu)、影響mRNA-LNP穩(wěn)定性的因素以及優(yōu)化mRNA-LNP產(chǎn)品穩(wěn)定性的策略。對(duì)mRNA-LNP結(jié)構(gòu)的分析表明,mRNA、可電離的陽(yáng)離子脂質(zhì)和水存在于LNP中,中性輔助脂質(zhì)主要位于包裹的外壁。mRNA水解是mRNA-LNP不穩(wěn)定的主要因素。目前尚不清楚LNP中的水如何與mRNA相互作用,以及mRNA的易降解位點(diǎn)通過(guò)與可離子化的陽(yáng)離子脂質(zhì)的結(jié)合而受到多大程度地保護(hù)。為了提高mRNA-LNP疫苗的穩(wěn)定性,首先,應(yīng)優(yōu)化mRNA的核苷酸組成。其次,更好地了解mRNA在LNP中所處的環(huán)境可能有助于合理調(diào)整LNP結(jié)構(gòu)以保持mRNA的完整性。此外,干燥技術(shù)如凍干,可能是仍有待探索的可行途徑。
1、背景介紹
當(dāng)下正在開(kāi)發(fā)的許多疫苗中,有兩款疫苗已在預(yù)防感中顯示出高效保護(hù)率,這兩款疫苗代著新一代疫苗產(chǎn)品:它們由脂質(zhì)納米粒包裹信使核糖核酸鏈(mRNA)。BioNTech/Pfizer和Moderna開(kāi)發(fā)的這些mRNA疫苗的保護(hù)效力約為95%,并且是首批獲得FDA“緊急使用授權(quán)”和EMA “條件批準(zhǔn)”的mRNA疫苗。疫苗mRNA編碼SARS-CoV-2病毒的刺突(S)糖蛋白,其中包括兩個(gè)脯氨酸替換(K986P和V987P突變),以穩(wěn)定糖蛋白的融合前構(gòu)象。在肌肉 (IM) 注射給藥后,LNP系統(tǒng)使宿主細(xì)胞能夠攝取并遞送mRNA 到細(xì)胞質(zhì)內(nèi),其中mRNA序列在核糖體中翻譯成S蛋白。在宿主細(xì)胞進(jìn)行翻譯后加工后,S蛋白在細(xì)胞表面以其融合前構(gòu)象作為膜結(jié)合抗原被呈遞,為B細(xì)胞提供抗原靶標(biāo)。此外,部分翻譯表達(dá)的S蛋白進(jìn)入抗原呈遞途徑,通過(guò)T細(xì)胞表位的組織相容性復(fù)合體(MHC)呈遞提供T細(xì)胞的抗原識(shí)別。EMA評(píng)估報(bào)告將mRNA疫苗在注射部位的作用機(jī)制認(rèn)定如下:“注射LNP包裹的mRNA疫苗會(huì)導(dǎo)致短暫的局部炎癥,從而促使中性粒細(xì)胞和抗原呈遞細(xì)胞(APC)募集到注射部位,招募的APC能夠攝取 LNP納米粒繼而表達(dá)S蛋白,隨后可以遷移到發(fā)生T細(xì)胞的局部淋巴結(jié)”,由于這種固有的先天免疫,沒(méi)有必要用額外的佐劑配制mRNA疫苗。有趣的是,輝瑞/BioNTech和Moderna專(zhuān)門(mén)使用修飾后的核糖核苷酸來(lái)構(gòu)建mRNA,以降低(而不是提高)mRNA固有的免疫原性,強(qiáng)調(diào)需要適當(dāng)平衡mRNA疫苗的先天免疫活性(下文詳細(xì)討論)。體內(nèi)抗原表達(dá)可以通過(guò)疫苗給藥后來(lái)實(shí)現(xiàn),與mRNA疫苗的自佐劑特性相配合,終產(chǎn)生有效地中和抗體應(yīng)答和細(xì)胞免疫,從而為疫苗接受者降低感的風(fēng)險(xiǎn)。
與其他類(lèi)型的疫苗相比,mRNA疫苗有幾個(gè)優(yōu)點(diǎn)。mRNA疫苗的一個(gè)普遍優(yōu)勢(shì)是它們的開(kāi)發(fā)相對(duì)較快,因?yàn)閙RNA-LNP是一種平臺(tái)技術(shù)。在鑒定保護(hù)性蛋白抗原并對(duì)相應(yīng)基因進(jìn)行測(cè)序后,可在數(shù)周內(nèi)制備mRNA。由于編碼不同抗原的mRNA在化學(xué)和物理上高度相似,新mRNA疫苗的配方設(shè)計(jì)和制造過(guò)程遵循相同的步驟。與有復(fù)制缺陷的病毒型載體相比,mRNA疫苗可能有更高的病毒保護(hù)效力。與基于病毒載體的疫苗不同,機(jī)體不會(huì)對(duì)載體產(chǎn)生免疫反應(yīng)。在這方面,mRNA疫苗類(lèi)似于基于脫氧核糖核酸(DNA)的疫苗。然而,DNA疫苗仍有極小的機(jī)會(huì)進(jìn)行潛在的基因組整合。此外,與mRNA疫苗相比,DNA疫苗在早期臨床試驗(yàn)中顯示出相當(dāng)?shù)偷拿庖咴?,這可能是因?yàn)榛贒NA的疫苗需要進(jìn)入細(xì)胞核才能發(fā)揮作用,從而使有效遞送變得復(fù)雜??傮w而言,靈活的設(shè)計(jì)、標(biāo)準(zhǔn)化的生產(chǎn)流程和相對(duì)較短的細(xì)胞質(zhì)存在時(shí)間使mRNA疫苗非常有優(yōu)勢(shì),尤其是在病毒快速變異的大流行背景下。
然而,在開(kāi)發(fā) mRNA疫苗時(shí)遇到的挑戰(zhàn)之一是它們的穩(wěn)定性差。目前,大多數(shù)mRNA疫苗是通過(guò)肌肉注射給藥的,在注射部位被宿主細(xì)胞攝取mRNA繼而表達(dá)出抗原。mRNA疫苗的早期研究表明,裸露的mRNA在給藥后會(huì)迅速降解。因此,在過(guò)去很多年,人們一直在努力改善體內(nèi)給藥后mRNA的穩(wěn)定性,一種方法是通過(guò)優(yōu)化mRNA結(jié)構(gòu)的方法來(lái)減緩其降解。另一種成功且目前廣使用的方法是用LNP將mRNA包封,從而保護(hù) LNP中的mRNA。這減少了給藥后mRNA過(guò)早的降解,并增強(qiáng)了向抗原呈遞細(xì)胞胞內(nèi)遞送的能力。
盡管目前在提高mRNA-LNP疫苗的體內(nèi)穩(wěn)定性和功效方面取得了進(jìn)展,但對(duì)其儲(chǔ)存過(guò)程中的穩(wěn)定性仍然關(guān)注較少。為了疫苗能有效地在全球范圍內(nèi)進(jìn)行流通,mRNA-LNP疫苗能夠在冷藏溫度(2-8°C)或更高的溫度下有足夠長(zhǎng)的有效期。目前,公開(kāi)資料中幾乎沒(méi)有關(guān)于mRNA-LNP制劑長(zhǎng)期儲(chǔ)存穩(wěn)定性數(shù)據(jù)。此外,尚不清楚在LNP中包封的mRNA會(huì)在多大程度上改善mRNA疫苗的儲(chǔ)存穩(wěn)定性。關(guān)于LNP包封mRNA的結(jié)構(gòu)和形態(tài)、LNP組分的化學(xué)穩(wěn)定性和mRNA-LNP系統(tǒng)的膠體穩(wěn)定性也知之甚少。現(xiàn)在已知的是,為了更長(zhǎng)時(shí)間地儲(chǔ)存當(dāng)前的mRNA疫苗,它們必須被冷凍。目前Moderna和BioNTech/輝瑞的疫苗分別需要在-15~-25℃和-60~-90℃儲(chǔ)存,但迄今為止,這兩家公司mRNA疫苗產(chǎn)品的降解過(guò)程和儲(chǔ)存溫度要求不同的原因尚不完全清楚。
將mRNA-LNP需要冷凍儲(chǔ)存阻礙了疫苗的流通。尤其是,需要儲(chǔ)存在-60~-90 °C的極低溫,對(duì)疫苗在全球運(yùn)輸、儲(chǔ)存和流通是個(gè)極大的挑戰(zhàn)。大多數(shù)其他疫苗可以在2–8 °C下儲(chǔ)存。顯然,當(dāng)前迫切需要研發(fā)出性質(zhì)更加穩(wěn)定不需要冷凍儲(chǔ)存的mRNA-LNP疫苗。本綜述概述了使mRNA疫苗更穩(wěn)定的方法,以便它們可以在不太極端的溫度下儲(chǔ)存更長(zhǎng)時(shí)間。為了探討該主題,討論了mRNA-LNP疫苗的特性及其對(duì)儲(chǔ)存穩(wěn)定性的影響,以確定mRNA疫苗不穩(wěn)定的原因并探索提高其穩(wěn)定性的方法。
mRNA疫苗概述
mRNA-LNP 疫苗的組成是其穩(wěn)定性的基礎(chǔ)。在針對(duì)****的疫苗開(kāi)發(fā)過(guò)程中,已經(jīng)有多種不同的 mRNA 候選疫苗。目前,有10種不同的針對(duì)**的mRNA疫苗已進(jìn)入臨床試驗(yàn),包括常規(guī) mRNA疫苗和自擴(kuò)增 mRNA (SAM)。目前有三種“常規(guī)”可編碼完整的S蛋白的mRNA 疫苗已獲批或處于臨床試驗(yàn)后期。它們是 Moderna 的 mRNA-1273 疫苗、BioNTech/Pfizer 的 BNT162b2/Comirnaty 和 CureVac 的 CVnCoV(可見(jiàn)表1)。
有幾篇綜述對(duì)這三種**的 mRNA疫苗進(jìn)行了詳細(xì)比較,包括它們?cè)?mRNA 結(jié)構(gòu)和LNP設(shè)計(jì)方面的差異和相似之處。以下部分旨在概述這些疫苗中mRNA 成分和 LNP遞送系統(tǒng)的功能和特征,因?yàn)樗鼈儗?duì) mRNA 疫苗的體內(nèi)給藥和儲(chǔ)存期間的穩(wěn)定性起著關(guān)鍵作用。
表1 有關(guān)目前上市使用或臨床 III 期試驗(yàn)的三種 mRNA-LNP疫苗的信息,出于比較原因,添加了 Onpattro(一種 siRNA-LNP 藥物產(chǎn)品)的藥物產(chǎn)品信息。
* NDA 210922 ONPATTRO (patisiran) 脂質(zhì)復(fù)合物注射液;藥品質(zhì)量審查附錄(FDA,2017 年)。
a N = 可電離的陽(yáng)離子脂質(zhì)(氮),P = 核苷酸(磷酸鹽)。
b推測(cè)
2.1 優(yōu)化mRNA體內(nèi)穩(wěn)定性和翻譯能力的mRNA工程
mRNA由于其磷酸基團(tuán)上帶有負(fù)電荷,在生理 pH 范圍內(nèi)是以聚陰離子大分子的形式存在。遞送mRNA 疫苗的**個(gè)障礙是由于核糖核酸酶在細(xì)胞外環(huán)境中含量豐富,裸露的mRNA在注射后容易被核糖核酸酶 (RNase) 迅速降解。其次, mRNA進(jìn)入細(xì)胞會(huì)被細(xì)胞內(nèi)RNA受體識(shí)別,包括內(nèi)體Toll 樣受體 (TLR) 和細(xì)胞質(zhì)核酸受體。mRNA與這些宿主防御受體的結(jié)合會(huì)**先天免疫通路,會(huì)導(dǎo)致數(shù)百個(gè)基因的表達(dá)。一方面,這可以為疫苗提供佐劑樣作用。另一方面,它導(dǎo)致細(xì)胞處于抗病毒狀態(tài),這強(qiáng)烈降低了細(xì)胞內(nèi)mRNA的穩(wěn)定性和翻譯表達(dá)。攝取進(jìn)入細(xì)胞后, mRNA 鏈需要與核糖體結(jié)合以實(shí)現(xiàn)所編碼蛋白質(zhì)的翻譯表達(dá)??梢酝ㄟ^(guò)mRNA工程**改善mRNA 的蛋白質(zhì)合成速率和功能半衰期,mRNA疫苗中的mRNA鏈的典型元件示意圖如圖1所示。
圖1 體外轉(zhuǎn)錄 (IVT) mRNA 的結(jié)構(gòu)元件。這些序列中的每一個(gè)部分都可以?xún)?yōu)化和修改,以調(diào)節(jié)mRNA 的穩(wěn)定性、翻譯能力和免疫**能力。
有很多研究嘗試提高mRNA 分子的體內(nèi)穩(wěn)定性和翻譯能力,同時(shí)避免不需要的先天免疫**。目前達(dá)成共識(shí)的是,這可以通過(guò)優(yōu)化 mRNA 的調(diào)控區(qū)域5' 帽、poly-A 尾和非翻譯區(qū) (UTR)來(lái)實(shí)現(xiàn)。UTR位于mRNA 編碼區(qū)的兩側(cè),可以調(diào)節(jié)mRNA的穩(wěn)定性和翻譯。
poly-A尾也能調(diào)節(jié)mRNA的穩(wěn)定性,因?yàn)樗目s短和去除都會(huì)導(dǎo)致 mRNA 的降解。5' 帽結(jié)構(gòu)對(duì)于蛋白質(zhì)生產(chǎn)和翻譯啟動(dòng)子的結(jié)合很重要。此外,具有**化 GC(鳥(niǎo)嘌呤-胞嘧啶)含量的mRNA 結(jié)合密碼子優(yōu)化,即在編碼區(qū)選擇“常用密碼子”,可提高穩(wěn)定性和翻譯水平。
另一個(gè)關(guān)鍵因素是mRNA的二級(jí)結(jié)構(gòu),它可以通過(guò)密碼子優(yōu)化和計(jì)算工具來(lái)改變一級(jí)序列使其穩(wěn)定。通過(guò)選擇“高度結(jié)構(gòu)化的編碼序列”在mRNA中構(gòu)建二級(jí)結(jié)構(gòu) (除了5' UTR 區(qū)域)也會(huì)產(chǎn)生更高的體內(nèi)翻譯水平,因?yàn)閙RNA體內(nèi)半衰期得到延長(zhǎng)?;蛘?,Mauger等人證明天然存在的修飾尿苷的引入,例如使用1-甲基-假尿苷(m1Ψ)代替尿苷,會(huì)帶來(lái)mRNA二級(jí)結(jié)構(gòu)的整體變化,從而達(dá)到更高水平的蛋白質(zhì)表達(dá)。
重要的是,目前將RNA結(jié)合蛋白對(duì)mRNA的胞內(nèi)識(shí)別降至**的***方法是在mRNA中引入這些修飾的尿苷,這些蛋白參與對(duì)外來(lái)mRNA的先天免疫反應(yīng),反過(guò)來(lái)增強(qiáng)了生物穩(wěn)定性和翻譯能力,同時(shí)降低了mRNA 疫苗的免疫原性。此外,還有跡象表明,m1Ψ 提高了mRNA 的堿基堆積和熔點(diǎn),從而使mRNA更加穩(wěn)定。
這可能意味著 Moderna 和 BioNTech/Pfizer 的**疫苗,1mΨ的摻入也會(huì)提高給藥前mRNA 的穩(wěn)定性。*近有文章發(fā)表了對(duì) CureVac在 CVnCoV mRNA 工程中所做工作的有趣分析,CureVac 采用了不同的策略。然而,即使優(yōu)化了mRNA的結(jié)構(gòu),直接注射裸露的mRNA 也不會(huì)引起強(qiáng)烈的免疫反應(yīng),這可能是因?yàn)槁懵兜膍RNA的細(xì)胞轉(zhuǎn)染能力差和對(duì)RNA酶(RNase)敏感。這說(shuō)明*優(yōu)化mRNA結(jié)構(gòu)不足以創(chuàng)建有效的 mRNA 疫苗,仍然需要額外的保護(hù)和遞送系統(tǒng)。
另一種類(lèi)型的 mRNA 疫苗SAMs不*編碼目標(biāo)抗原,還編碼RNA 聚合酶——來(lái)自病毒的“自我放大”因子。通常,SAMs由 9 kb 的mRNA核苷酸組成,而非自我復(fù)制的mRNA疫苗的序列長(zhǎng)度*為2-4 kb。開(kāi)發(fā) SAM 候選疫苗的目的是替代典型的兩劑策略的“啟動(dòng)-加強(qiáng)”方案,而是達(dá)到每位接種者單次注射。由于自帶的復(fù)制能力,SAM疫苗的注射劑量低于傳統(tǒng)mRNA疫苗,一劑便可能達(dá)到足夠保護(hù)效力。
當(dāng) SAM 在宿主細(xì)胞中被翻譯時(shí),一種RNA聚合酶合成與編碼mRNA 模板互補(bǔ)的反義RNA中間體,再轉(zhuǎn)錄為許多編碼mRNA 分子,從而使抗原表達(dá)延長(zhǎng)和增強(qiáng)。目前兩種 SAM 疫苗都編碼完整的S 蛋白,并且這些疫苗在臨床試驗(yàn)中的**劑量比常規(guī)mRNA 疫苗的典型劑量低十倍以上。臨床開(kāi)發(fā)中的兩種SAM 疫苗是倫敦帝國(guó)理工學(xué)院的nCoVsaRNA 和 Arcturus/Duke-NUS 的 ARCT-021,兩種疫苗均采用的是LNP包裹技術(shù)。
LNPs 作為遞送系統(tǒng)
為了克服裸露的mRNA轉(zhuǎn)染的種種問(wèn)題,已經(jīng)開(kāi)發(fā)了保護(hù)性遞送系統(tǒng)。目前的mRNA疫苗(表 1)都在使用 LNP 技術(shù)。這說(shuō)明了使用LNP能在穩(wěn)定mRNA 的同時(shí)并將其遞送到細(xì)胞中。mRNA疫苗中的LNP 由四種主要成分組成(見(jiàn)表1):中性磷脂、膽固醇、聚乙二醇 (PEG) 脂質(zhì)和可電離脂質(zhì)??呻婋x脂質(zhì)含有帶正電荷的可電離胺基團(tuán)(在低 pH 條件下電離),可在顆粒形成過(guò)程中與陰離子mRNA 相互作用,并在細(xì)胞攝取過(guò)程中促進(jìn)膜融合。此外,PEG化脂質(zhì)用于控制粒徑并充當(dāng)空間屏障起穩(wěn)定作用,防止儲(chǔ)存過(guò)程LNP微粒聚集。通過(guò)使用微流控混合生產(chǎn)技術(shù),這些脂質(zhì)成分與 mRNA 一起形成大小約為 60-100 nm 的顆粒。例如,SARS-CoV-2 候選疫苗nCoVsaRNA和ARCoV的平均粒徑分別為75 nm和89 nm。
表一:
LNPs與脂質(zhì)體的不同之處在于微粒中存在脂質(zhì),來(lái)自幾項(xiàng)研究的數(shù)據(jù)表明水也存在于微粒內(nèi)部某些空間。這意味著mRNA即使被包封也可能暴露于水性環(huán)境中。這種類(lèi)型的內(nèi)部結(jié)構(gòu),先前已在未包載和包載siRNA的LNP中被冷凍電鏡所觀察到。類(lèi)似地,mRNA-LNPs 的冷凍電鏡結(jié)果也顯示了電子致密核,勞氏紫(Thionine)對(duì)RNA進(jìn)行染色用于冷凍電鏡對(duì)比度增強(qiáng)(見(jiàn)圖2)。
盡管mRNA-LNP 的共同特征是脂質(zhì),但該的確切結(jié)構(gòu)特征及其對(duì)脂質(zhì)成分(摩爾比)和 mRNA 定位的依賴(lài)性仍存在爭(zhēng)議(見(jiàn)圖3)。正如 RiboGreen檢測(cè)實(shí)驗(yàn)所確定的那樣,mRNA 肯定位于 LNP 內(nèi)部。RiboGreen 是一種染料,當(dāng)與單鏈 mRNA 結(jié)合時(shí)會(huì)顯示熒光,但不能進(jìn)入 LNP。在 mRNA-LNP 制劑中,例如mRNA 疫苗的制劑,可與RiboGreen結(jié)合產(chǎn)生熒光的mRNA 比例非常低,因此,采用RiboGreen來(lái)測(cè)定的包封率通常 > 90%。綜上所述,冷凍電鏡(圖2) 和包封率證據(jù)表明,mRNA-LNPs形成納米粒子,其中包封了 mRNA,可免受外部介質(zhì)的影響,LNPs包封的mRNA的結(jié)構(gòu)有3種模型,這些主要來(lái)源于siRNA-LNPs分析(圖3)。
圖2 mRNA-LNP 的冷凍電鏡圖像顯示具有明顯不同電子密度的“囊泡”結(jié)構(gòu)
圖3 siRNA-LNP 和 mRNA-LNP 結(jié)構(gòu)的推測(cè)模型的示意圖 A:多層囊泡;B:納米結(jié)構(gòu)核;C:均質(zhì)核殼
mRNA疫苗所包封的mRNA會(huì)影響終LNP的結(jié)構(gòu):siRNA 在結(jié)構(gòu)和分子量大小上與 mRNA 有很大不同(表 2)并且N/P(可電離的陽(yáng)離子脂質(zhì)與核苷酸磷酸鹽)摩爾比不同,N/P摩爾比分別為3和6(表 1)。mRNA 至少比 siRNA 大 100 倍,這會(huì)影響 LNP 的結(jié)構(gòu)。此外,有跡象表明 mRNA 位于 LNP 的核,而siRNA 更靠近表面,mRNA 可以形成“囊泡”(圖 2)。LNP 囊泡部分的組成是一個(gè)有爭(zhēng)議的問(wèn)題,在這種狀態(tài)時(shí):“mRNA 可以從帶電的脂質(zhì)中解離,留在充滿(mǎn)溶劑的囊泡隔室中”。
表2 mRNA 和siRNA分子之間的差異
mRNA-LNP不太可能是(圖 3A)的多層囊泡模型。它與mRNA-LNP的 TEM結(jié)果中電子致密核位置不對(duì)應(yīng)。目前,大多數(shù)研究人員認(rèn)為 mRNA-LNP 貼近核殼模型(圖3 B和C),這意味著納米顆粒具有表面層和無(wú)定形的各向同性核。Viger-Gravel等,使用核磁共振光譜證明LNP結(jié)構(gòu)的兩種類(lèi)型的核是可能的。
他們描述了一個(gè)被陽(yáng)離子脂質(zhì)包圍(圖3B)的包含水孔的無(wú)定形核模型。他們還假設(shè)核中的脂質(zhì)可以均勻分散,中間有“小水球”(圖 3C)。后者(圖3B和C)跟siRNA-LNPs和mRNA-LNPs在實(shí)驗(yàn)觀察到的結(jié)果更吻合。
Arteta等人,使用冷凍電鏡、小角 X 射線散射 (SAXS) 和小角度中子散射 (SANS) 測(cè)量 mRNA-LNP 結(jié)構(gòu)模型。他們發(fā)現(xiàn)DSPC和PEG化脂質(zhì)以及部分可電離的陽(yáng)離子脂質(zhì)和膽固醇是位于LNP 的表面,可電離的陽(yáng)離子脂質(zhì)、膽固醇(取決于其濃度)、水和 mRNA 的主要部分分布在核內(nèi)部。有趣的是,他們的研究表明,各向同性LNP 核由24%(體積分?jǐn)?shù))的水組成。他們指出 mRNA 位于水柱內(nèi),水柱被陽(yáng)離子脂質(zhì)包圍(如圖4所示)。這意味著 mRNA 至少部分暴露于LNP 內(nèi)部的水中,這可能導(dǎo)致mRNA在非冷凍條件下儲(chǔ)存時(shí)不穩(wěn)定,Sebastiani等人也報(bào)道了類(lèi)似的結(jié)果。
因此,研究 mRNA 如何與 LNP 中的水和可電離的陽(yáng)離子脂質(zhì)相互作用是一件很有趣的事。mRNA 是親水的,它可以通過(guò)靜電和氫鍵與可電離的陽(yáng)離子脂質(zhì)相互作用(通常表觀pKa < 6.5)。這取決于 LNP 內(nèi)部的pH值,如果 LNP 外殼對(duì)質(zhì)子具有滲透性——這很可能,因?yàn)?2-(對(duì)甲苯胺基)-6-萘磺酸 (TNS) 和勞氏紫等離子化染料可以進(jìn)入 LNP 核,那么LNP內(nèi)部的pH值與制劑的其余部分應(yīng)該相似,約為7 到 8,這意味著大多數(shù)可電離的陽(yáng)離子脂質(zhì)將不帶電。
然而,由于可電離的陽(yáng)離子脂質(zhì)堆積在核中,它們可能表現(xiàn)出聚電解質(zhì)行為,導(dǎo)致 Henderson-Hasselbalch 方程的偏差,即滴定曲線的“拖尾”(脂質(zhì)膜內(nèi)的可電離脂質(zhì)的表觀pKa可能與實(shí)際值有較大偏差,這意味著pKa為6.5左右的可電離脂質(zhì)在脂質(zhì)膜內(nèi)的表觀pKa可能與理論值有1~2個(gè)pKa單位的偏差,所以pKa為6.5左右的可電離脂質(zhì)在pH值為7-8之間的脂膜內(nèi)時(shí),依然有可能絕大部分呈現(xiàn)帶正電的狀態(tài),注:紅色斜體部分是對(duì)一些較復(fù)雜概念的進(jìn)一步解讀,后同)。此外,mRNA 和可電離的陽(yáng)離子脂質(zhì)之間的相互作用可能會(huì)影響電離行為。
對(duì)于 siRNA,發(fā)現(xiàn)與可電離陽(yáng)離子脂質(zhì)存在較弱的靜電相互作用,這表明至少對(duì)于 siRNA-LNP 制劑,內(nèi)部的pH值接近或等于外部的pH值。對(duì)于 mRNA-LNP,尚未進(jìn)行此類(lèi)實(shí)驗(yàn)研究。mRNA 和陽(yáng)離子脂質(zhì)復(fù)合的分子動(dòng)力學(xué)模擬研究證明了脂質(zhì)-脂質(zhì)簇和脂質(zhì)-mRNA 簇的形成。靜電力和氫鍵都在驅(qū)動(dòng)陽(yáng)離子脂質(zhì)和 mRNA 的相互作用。
圖4 mRNA-LNPs核中mRNA-水柱的示意圖
Arteta 等人的另一個(gè)有趣發(fā)現(xiàn)是他們的mRNA-LNP 的外殼是單層的。其他研究人員根據(jù)冷凍電鏡(圖 2)或 SANS結(jié)果分析提出,mRNA-LNPs 的外殼由一個(gè)或多個(gè)雙層組成。這些相互矛盾的發(fā)現(xiàn)表明,使用這些技術(shù)評(píng)估m(xù)RNA-LNP 殼的性質(zhì)是困難的,可能存在多種類(lèi)型的mRNA-LNP 結(jié)構(gòu),其結(jié)構(gòu)取決于脂質(zhì)的性質(zhì)和mRNA-LNP 的制備方法。反過(guò)來(lái),不同的結(jié)構(gòu)可能會(huì)對(duì)不同配方的穩(wěn)定性產(chǎn)生影響??傊瑔?wèn)題仍然在于目前我們尚不清楚 mRNA-LNP 的結(jié)構(gòu)以及包封的mRNA 與各種脂質(zhì)成分之間的相互作用。
對(duì)各種 mRNA疫苗成分的分析表明,它們具有共同特征,但也存在差異(表 1)。LNP 配方、修飾核苷的使用、高GC含量以及常規(guī) mRNA 和 SAM 疫苗之間的長(zhǎng)度差異可能會(huì)影響這些 mRNA疫苗在儲(chǔ)存過(guò)程中的物理和化學(xué)穩(wěn)定性。
mRNA疫苗的體外穩(wěn)定性
正如之前在背景介紹中提到的,目前已批準(zhǔn)的 mRNA疫苗流通的主要障礙之一是它們必須以冷凍形式儲(chǔ)存。在 2–8 °C 的溫度下,輝瑞/BioNTech 和 Moderna 疫苗分別可穩(wěn)定保存 5 天和 30 天,兩家公司都為終端使用提供了詳細(xì)的處理說(shuō)明。有趣的是,據(jù)報(bào)道 CureVac 的候選疫苗在冰箱溫度和 -60 °C 下可穩(wěn)定 3 個(gè)月。這些是目前發(fā)布了mRNA-LNP長(zhǎng)期儲(chǔ)存條件的制造商,這種苛刻的溫度要求嚴(yán)重影響了這些疫苗的儲(chǔ)存、運(yùn)輸和流通。然而,迄今為止,在公開(kāi)資料中幾乎沒(méi)有關(guān)于優(yōu)化mRNA 疫苗穩(wěn)定性的信息。本節(jié)旨在概述影響 mRNA-LNP 疫苗成分穩(wěn)定性的因素,并討論分析評(píng)價(jià)這種穩(wěn)定性的方法。
mRNA穩(wěn)定性
強(qiáng)烈影響所需儲(chǔ)存條件的主要因素是 mRNA 的穩(wěn)定性。如上文2.1 節(jié)所述,mRNA 分子的結(jié)構(gòu)經(jīng)過(guò)專(zhuān)門(mén)設(shè)計(jì)可以用于增加體內(nèi)靶抗原的翻譯。mRNA 的特殊性在于,即使是長(zhǎng) mRNA 鏈(通常長(zhǎng)度在 1000 到 5000 個(gè)核苷酸之間)中的一個(gè)核苷酸發(fā)生變化(鏈斷裂或堿基氧化)便會(huì)導(dǎo)致翻譯終止。這使得 mRNA 疫苗與其他疫苗完全不同,在其他疫苗中,抗原的微小變化不一定對(duì)其功效產(chǎn)生顯影響。因此,對(duì)于 mRNA 疫苗,監(jiān)測(cè)整個(gè)分子的完整性是至關(guān)重要的。
mRNA 降解的方式有多種,可以分為化學(xué)和物理降解?;瘜W(xué)降解包括 mRNA 分子中化學(xué)鍵的改變。物理不穩(wěn)定性包括變性(二級(jí)和三級(jí)結(jié)構(gòu)的喪失),與變性對(duì)蛋白質(zhì)生物制劑活性的影響不同,物理不穩(wěn)定性對(duì)mRNA的影響可能不太明顯。然而,變性還包括聚集和沉淀等變化,這些變化會(huì)影響mRNA的翻譯表達(dá)。在一篇關(guān)于核酸穩(wěn)定性的綜述中,Pogocki 和 Sch?neich 指出化學(xué)降解在siRNA降解中的影響比物理不穩(wěn)定性更大,對(duì)于鏈長(zhǎng)更長(zhǎng)的 mRNA來(lái)說(shuō)可能更是如此。
mRNA在體外的化學(xué)降解主要包括水解和氧化,水解主要是發(fā)生在mRNA 分子骨架的磷酸二酯鍵(圖5 )。核糖上的2' OH 基團(tuán)起著至關(guān)重要的作用,因?yàn)閷?dǎo)致 mRNA 鏈斷裂的酯交換反應(yīng)起始于磷酸酯鍵上的 2'OH 基團(tuán)的親核進(jìn)攻導(dǎo)致 P-O5' 酯鍵斷裂(圖5)。這個(gè)過(guò)程需要水,可以被核酸酶催化,也可以被 mRNA 分子本身和其他外源因素如酸和堿催化。在有關(guān) mRNA 水解的兩篇文獻(xiàn)中,作者指出 mRNA 的堿基序列和二級(jí)結(jié)構(gòu)會(huì)影響水解速率。具體而言,堿基堆積可能會(huì)降低磷酸二酯鍵的裂解速率,可以小化 mRNA 分子的“平均未配對(duì)概率”。可以使用專(zhuān)門(mén)設(shè)計(jì)的算法來(lái)選擇可以形成大雙鏈區(qū)域的單鏈 mRNA 的核苷酸序列。據(jù)稱(chēng),采用這種方法優(yōu)化后,體外穩(wěn)定性得到了改善。
CureVac、輝瑞/BioNTech 和 Moderna 疫苗之間的區(qū)別在于后兩者具有 1-甲基-假尿苷的單核苷摻入。之前的一項(xiàng)研究表明,這種修飾提高了 RNA 二級(jí)結(jié)構(gòu)的穩(wěn)定性。CureVac 采用提高GC比例策略,具有類(lèi)似的效果。
圖5 通過(guò) 2',3'-環(huán)狀磷酸酯,堿基催化RNA分子內(nèi)的磷酸二酯鍵水解、B表示Br?nsted堿。
相反,氧化會(huì)影響堿基,并在較小程度上影響mRNA 核糖單位的糖基團(tuán)。氧化可導(dǎo)致堿基裂解、鏈斷裂和 mRNA 二級(jí)結(jié)構(gòu)的改變。然而,如前所述,水解似乎被認(rèn)為是驅(qū)動(dòng) mRNA 降解的關(guān)鍵因素。
LNP穩(wěn)定性
除了mRNA 的完整性外,LNP 的穩(wěn)定性對(duì)于 mRNA-LNP 疫苗的質(zhì)量也至關(guān)重要。目前的mRNA疫苗沒(méi)有披露關(guān)于LNP 穩(wěn)定性測(cè)試的數(shù)據(jù),但 Onpattro (patisaran) 的siRNA-LNP 制劑保存在2~8°C 之間時(shí)具有三年的有效期,同時(shí)該產(chǎn)品不能冷凍保存。
Onpattro 的LNP 系統(tǒng)的組成是:可電離的陽(yáng)離子脂質(zhì)DLin-MC3-DMA、DSPC、膽固醇、PEG2000-C-DMG(見(jiàn)表 1)(摩爾比 50:10:38.5:1.5),它們?cè)诮M成上類(lèi)似于 Comirnaty 和 mRNA-1273的LNP。在一項(xiàng)siRNA-LNPs 的研究中用類(lèi)脂質(zhì)306O 13代替DLin-MC3-DMA,樣品水溶液在 2°C 、pH 7 的環(huán)境下下能穩(wěn)定儲(chǔ)存156 天,其粒徑和siRNA包封率沒(méi)有明顯變化。Suzuki 等人的補(bǔ)充研究表明 siRNA-LNP 能在 4°C 環(huán)境下穩(wěn)定儲(chǔ)存1.5??傊?,這些數(shù)據(jù)都表明是mRNA 的不穩(wěn)定,而不是 LNP 的不穩(wěn)定,導(dǎo)致了當(dāng)前mRNA-LNP疫苗的儲(chǔ)存條件嚴(yán)苛和保質(zhì)期短。
Fan等人總結(jié)了脂質(zhì)體和 LNP的穩(wěn)定性及其質(zhì)量屬性。LNP 可以承受化學(xué)和物理不穩(wěn)定性,化學(xué)不穩(wěn)定性包括 LNP 中易水解和氧化的脂質(zhì)的降解。脂質(zhì)氧化可能發(fā)生在不飽和脂肪酸部分(Comirnaty 和 mRNA-1273 不存在該問(wèn)題)和膽固醇,氧化可能是PEG2000 -DMG中PEG基團(tuán)存在雜質(zhì)導(dǎo)致的結(jié)果。除此之外,氧化性雜質(zhì)也可能導(dǎo)致包封的mRNA 氧化。脂質(zhì)例如 DSPC 和可電離的陽(yáng)離子脂質(zhì)中的羧酸酯鍵容易受溫度和pH依賴(lài)性的水解的影響(圖 6)。
LNP 穩(wěn)定性的另一個(gè)關(guān)鍵因素是物理穩(wěn)定性,主要有三種類(lèi)型的物理不穩(wěn)定性:包封的藥物的聚集、融合和泄漏。 LNP 在儲(chǔ)存和流通過(guò)程中容易發(fā)生 LNP 的聚集,所以為了增加穩(wěn)定性,LNP 中通常添加PEG化脂質(zhì),LNP微粒表面的PEG 分子可防止LNP 聚集。
另一種類(lèi)型的物理不穩(wěn)定性主要由于mRNA 的泄漏,這主要影響包封產(chǎn)品的穩(wěn)定性。值得注意的是,包封率通常 > 90%,并且尚未報(bào)道過(guò)在儲(chǔ)存期間出現(xiàn)mRNA泄露(用RiboGreen監(jiān)測(cè))的情況。未包封的mRNA(“裸露的mRNA”)幾乎不會(huì)被細(xì)胞攝??;而且它會(huì)迅速被降解,因此無(wú)法用于翻譯。
圖6 用于 mRNA-LNP疫苗BNT162b2 (Comirnaty) 和 mRNA-1273的脂質(zhì)。
由于注射 mRNA-LNP疫苗時(shí)的超敏反應(yīng)可能與PEG化脂質(zhì)有關(guān),因此,已經(jīng)研究了防止聚集體形成的替代脂質(zhì)。使用多聚肌氨酸修飾脂質(zhì)能使脂質(zhì)遞送系統(tǒng)更加穩(wěn)定,在防止LNP聚集的同時(shí)能夠減少超敏反應(yīng)。但是目前仍然需要更多的實(shí)驗(yàn)來(lái)確定這種 PEG化脂質(zhì)替代品是否能真正的提高 mRNA 的穩(wěn)定性(例如不含過(guò)氧化物,注:目前使用的PEG脂質(zhì)由于工藝原因,會(huì)有一定的過(guò)氧化物雜質(zhì),這會(huì)引起LNP中其他含有不飽和鍵的脂質(zhì)和mRNA的氧化降解)。
分析 LNP 穩(wěn)定性
Fan 等人在前面提到的文章中對(duì)監(jiān)測(cè) LNP 穩(wěn)定性的分析方法進(jìn)行了專(zhuān)業(yè)評(píng)估。我們推薦感興趣的讀者可以查看相關(guān)文獻(xiàn)。
mRNA-LNP中哪個(gè)成分更不穩(wěn)定?
迄今為止,已有幾項(xiàng)研究考察了在儲(chǔ)存期間穩(wěn)定 mRNA 和穩(wěn)定 LNP 的方法。然而,兩者之中哪一個(gè)才是mRNA-LNP穩(wěn)定性的瓶頸?當(dāng)mRNA-LNP 制劑未冷凍時(shí),是mRNA 降解?還是 LNP 降解導(dǎo)致穩(wěn)定性問(wèn)題?還是 mRNA 與 LNP 的組合?
與mRNA-LNP 系統(tǒng)相比,包封化學(xué)修飾且高度穩(wěn)定的siRNA 分子(例如 Onpattro)的LNP系統(tǒng)具有更長(zhǎng)的有效期。這表明當(dāng)前的穩(wěn)定性瓶頸不是 LNP,而是 mRNA。
迄今為止,公開(kāi)資料還沒(méi)有披露關(guān)于 mRNA-LNP 制劑中 mRNA 和 LNP 完整性的研究報(bào)告。在研究存儲(chǔ)效果的少數(shù)研究中,例如 Zhang等人的研究,并沒(méi)有考察長(zhǎng)期儲(chǔ)存的穩(wěn)定性。因此,我們將首先研究裸露的mRNA的長(zhǎng)期穩(wěn)定性,但需要注意的是,這可能與包封在 LNP中的 mRNA 的穩(wěn)定性有所不同(見(jiàn)下文)。
在Pascolo等人的綜述中,裸露的mRNA的水溶液在無(wú)RNase的情況下只能在4°C下儲(chǔ)存幾天。這似乎符合目前對(duì) mRNA 不穩(wěn)定性的看法。目前關(guān)于裸露的mRNA長(zhǎng)期穩(wěn)定性的研究表明,mRNA 需要冷凍或干燥才能保持更長(zhǎng)時(shí)間的穩(wěn)定。
Roesler等人2009年的研究表明,編碼熒光素酶的mRNA 在無(wú)RNA酶存在的條件下,分別以液體或凍干形式在室溫下儲(chǔ)存,表達(dá)效率分別在第8天和第16天開(kāi)始出現(xiàn)降低,凍干輔料和凍干工藝方面未經(jīng)優(yōu)化(見(jiàn)圖 7)。同時(shí)本研究無(wú)法得出關(guān)于2-8℃溫度下長(zhǎng)期儲(chǔ)存穩(wěn)定性的結(jié)論,因?yàn)榉€(wěn)定性研究只考察了32 天。
Wayment-Steele等人經(jīng)過(guò)基于理論降解速率計(jì)算,預(yù)測(cè) 長(zhǎng)度為4000 nt的mRNA在 pH 7.4 和5 °C 的條件下,存儲(chǔ)的半衰期為 941 天。他們注意到較長(zhǎng)的mRNA序列,例如SAM,更容易發(fā)生水解。由于這是jin基于水解降解動(dòng)力學(xué)的理論計(jì)算結(jié)果,可能會(huì)低估 了mRNA的實(shí)際降解速率,例如,當(dāng)存在痕量RNase時(shí),必須對(duì) mRNA 的穩(wěn)定性進(jìn)行更多研究才能知道m(xù)RNA實(shí)際存儲(chǔ)的穩(wěn)定性情況。
圖7 通過(guò)轉(zhuǎn)染BHK-21細(xì)胞中熒光素酶表達(dá)效率分析mRNA在水中的穩(wěn)定性
這些研究表明,在水溶液中 mRNA 可能不如 LNP 穩(wěn)定。然而,應(yīng)該重申的是,這兩種成分的穩(wěn)定性考察結(jié)果可能與LNP包封mRNA 的情況不同。如前幾節(jié)所述,mRNA 與可電離的陽(yáng)離子脂質(zhì)、膽固醇和水一起位于 LNP 核內(nèi)部(參見(jiàn)圖 4)。這意味著 mRNA 處于水性環(huán)境中,因此容易發(fā)生水解,其水解的機(jī)制可能與溶液中 mRNA水解 的機(jī)制相似。然而,另一方面,LNP 內(nèi)的 mRNA 可能通過(guò)疏水、氫鍵和/或靜電相互作用被可電離的脂質(zhì)包裹。在這種情況下,mRNA 可能比溶解在水溶液中的裸露的mRNA更穩(wěn)定。在沒(méi)有進(jìn)一步研究的情況下,只能得出結(jié)論,mRNA 的不穩(wěn)定性導(dǎo)致了儲(chǔ)存條件苛刻。
儲(chǔ)存條件不同的原因
當(dāng)前 mRNA 疫苗的另一個(gè)有趣方面是,不同廠家疫苗報(bào)告的儲(chǔ)存溫度和相應(yīng)的“有效期”差異很大:從 -80°C 到 2-8°C,從幾天到幾個(gè)月。是否因?yàn)閙RNA 疫苗處的不同導(dǎo)致這種儲(chǔ)存條件的差異?又或者,儲(chǔ)存條件的差異是否與熱穩(wěn)定性測(cè)試結(jié)果相關(guān)或更可靠的方法有關(guān)?這些信息很重要,因?yàn)樯钊肓私鈱?duì)穩(wěn)定性產(chǎn)生積極影響的因素可能是未來(lái)設(shè)計(jì)熱穩(wěn)定mRNA 疫苗的關(guān)鍵突破點(diǎn)。
Acuitas Therapeutics的首席執(zhí)行官Tom Madden 曾經(jīng)在采訪中表示,Moderna 和 Pfizer/BioNTech mRNA 疫苗可能具有相同的穩(wěn)定性。后者是否有可能使用更保守的方法來(lái)確保穩(wěn)定性?盡管如此,目前必須在 -60 至 -80 °C 之間儲(chǔ)存的Pfizer/BioNTech mRNA-LNP 疫苗很可能也在更高的溫度和冷藏條件下進(jìn)行了穩(wěn)定性考察,正如CureVac 科學(xué)家所做的那樣。
此外,穩(wěn)定性測(cè)試中的分析技術(shù)在靈敏度上可能不同,驗(yàn)收標(biāo)準(zhǔn)也可能不同。疫苗穩(wěn)定性研究報(bào)告的發(fā)布可能對(duì)這些疑問(wèn)作出回答,對(duì)此進(jìn)行比較研究會(huì)是很有趣的工作。
原文文獻(xiàn):
Linde,S;Dominik ,W;Jayesh A. K;Rein ,V;Gideon ,K;Wim ,J;Daan J.A. C.mRNA-lipid nanoparticle COVID-19 vaccines: Structure and stability.International Journal of Pharmaceutics.2021,601,120586
參考文獻(xiàn)來(lái)源:
1. Abdelwahed, W., Degobert, G., Stainmesse, S., Fessi, H., 2006. Freeze-drying of
nanoparticles: Formulation, process and storage considerations. Adv. Drug Deliv.
Rev. 58 (15), 1688–1713. https://doi.org/10.1016/j.addr.2006.09.017.
2. Yanez Arteta, M., Kjellman, T., Bartesaghi, S., Wallin, S., Wu, X., Kvist, A.J.,
Dabkowska, A., Sz′ekely, N., Radulescu, A., Bergenholtz, J., Lindfors, L., 2018.
Successful reprogramming of cellular protein production through mRNA delivered
by functionalized lipid nanoparticles. Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 115 (15),
E3351–E3360. https://doi.org/10.1073/pnas.1720542115.
3. Ayat, N.R., Sun, Z., Sun, D.a., Yin, M., Hall, R.C., Vaidya, A.M., Liu, X., Schilb, A.L.,
Scheidt, J.H., Lu, Z.-R., 2019. Formulation of biocompatible targeted ECO/siRNA
nanoparticles with long-term stability for clinical translation of RNAi. Nucleic Acid
Ther. 29 (4), 195–207. https://doi.org/10.1089/nat.2019.0784.
4. Baden, L.R., El Sahly, H.M., Essink, B., Kotloff, K., Frey, S., Novak, R., Diemert, D.,
Spector, S.A., Rouphael, N., Creech, C.B., McGettigan, J., Khetan, S., Segall, N.,
Solis, J., Brosz, A., Fierro, C., Schwartz, H., Neuzil, K., Corey, L., Gilbert, P.,
Janes, H., Follmann, D., Marovich, M., Mascola, J., Polakowski, L., Ledgerwood, J.,
Graham, B.S., Bennett, H., Pajon, R., Knightly, C., Leav, B., Deng, W., Zhou, H.,
Han, S., Ivarsson, M., Miller, J., Zaks, T., 2021. Efficacy and safety of the mRNA-
1273 SARS-CoV-2 vaccine. N. Engl. J. Med. 384 (5), 403–416. https://doi.org/
10.1056/NEJMoa2035389.
5. Ball, R.L., Bajaj, P., Whitehead, K.A., 2016. Achieving long-term stability of lipid
nanoparticles: examining the effect of pH, temperature, and lyophilization. Int. J.
Nanomed. 12, 305–315. https://doi.org/10.2147/IJN.S123062.
6. Bloom, K., van den Berg, F., Arbuthnot, P., 2020. Self-amplifying RNA vaccines for
infectious diseases. Gene Ther. 1–13 https://doi.org/10.1038/s41434-020-00204-y.
Brader, M.L., Williams, S.J., Banks, J.M., Hui, W.H., Zhou, Z.H., Jin, L., 2021.
7. Encapsulation state of messenger RNA inside lipid nanoparticles. Biophys. J. https://
doi.org/10.1016/j.bpj.2021.03.012.
8. Brisco, M.J., Morley, A.A., 2012. Quantification of RNA integrity and its use for
measurement of transcript number. e144–e144 Nucleic Acids Res. 40. https://doi.
org/10.1093/nar/gks588.
9.Burke, P.A., Gindy, M.E., Mathre, D.J., Kumar, V., Prud’homme, R.K., 2013. Preparation
of Lipid Nanoparticles. US 2013/0037977.
10. Buschmann, M.D., Carrasco, M.J., Alishetty, S., Paige, M., Alameh, M.G., Weissman, D.,
2021. Nanomaterial delivery systems for mRNA vaccines. Vaccines 9 (1), 65. https://
doi.org/10.3390/vaccines9010065.
